PCR核酸檢測(cè)試劑盒的使用就是這么簡(jiǎn)單

一、樣品DNA的制備

    用自選方法提取待測(cè)樣品的總DNA。注意：待測(cè)樣品的DNA純化方法是決定檢測(cè)靈敏度的關(guān)鍵因素。如果不能很好純化樣品DNA，后面的PCR再靈敏也不能提高整體檢測(cè)靈敏度。  

二、制備TB基因標(biāo)準(zhǔn)曲線

   （以10-10E6這6個(gè)10倍稀釋度為例。由于標(biāo)準(zhǔn)品濃度非常高，因此下列稀釋操作一定要在獨(dú)立的區(qū)域進(jìn)行，千萬不能污染樣品或PCR核酸檢測(cè)試劑盒的其他成分）。為增加產(chǎn)品穩(wěn)定性和避免擴(kuò)散傳染性病原，本產(chǎn)品不提供活體病毒做陽性對(duì)照，只提供沒有傳染性的、可以直接使用的DNA片段作為陽性對(duì)照。  

    1.標(biāo)記6個(gè)離心管，分別為6，5，4，3，2和1號(hào)。  

    2.用帶芯槍頭分別加入45μL超純水（建議用帶芯槍頭，下同）。  

    3.先將PCR核酸檢測(cè)試劑盒提供的陽性對(duì)照用超純水10倍梯度稀釋到10E7拷貝/μL（注：請(qǐng)不要將PCR核酸檢測(cè)試劑盒提供的標(biāo)準(zhǔn)品一次性稀釋至10E7拷貝/μL，建議每次稀釋10倍剃度稀釋，梯度稀釋至10E7拷貝/μL）。  

    4.在6號(hào)管中加入5μL10E7拷貝/μL的TB陽性對(duì)照(上步稀釋所得)，充分震蕩1分鐘，得10E6拷貝/μL的TB陽性對(duì)照。  

    5.換槍頭，從6號(hào)管中取5μL溶液到5號(hào)管中，充分震蕩1分鐘，得10E5拷貝/μL的TB陽性對(duì)照。  

    6.換槍頭，從5號(hào)管中取5μL溶液到4號(hào)管中，得10E4拷貝/μL的TB陽性對(duì)照。  

    7.重復(fù)上面的操作直到得到從10E6拷貝/μL到10E1拷貝/μL6個(gè)稀釋度的TB陽性對(duì)照。  

    8.NC管中不加任何陽性對(duì)照。  

    9.從1-6號(hào)管中分別取5μL和待測(cè)樣品一起進(jìn)行定量PCR（見下步），每個(gè)樣品做3次重復(fù)。PCR后得到每個(gè)陽性對(duì)照稀釋樣品的熒光PCRCt值，并以之為縱軸，以濃度的對(duì)數(shù)值為橫軸，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。