基本原理

活細(xì)胞（密度較小）和死細(xì)胞（密度較大）密度不同，從而有助于將活的淋巴細(xì)胞和紅細(xì)胞分離。

附加材料

高密度溶液：Ficoll-Paque（Ficoll和泛影酸鈉；Pharmacia LKB）或Lympholyte-M（Cedarlane）

12ml或50ml聚丙烯離心管（比聚苯乙烯離心管好）

注： Ficoll-Paque和Lympholyte-M的密度與溫度有關(guān)；該方法中所采用的以及其他商品化的高密度溶液適合在室溫中使用。因此應(yīng)注意使細(xì)胞懸液、離心和高密度溶液控制在室溫。否則會因活細(xì)胞沉入離心管底導(dǎo)致在密度界面上損失活細(xì)胞。

實驗方案

1、用RPMI-5*培養(yǎng)基混懸細(xì)胞，分裝到離心管中使其細(xì)胞數(shù)達(dá)到0.5×10⁸ ～1×10⁸個細(xì)胞/2ml（12ml離心管）或1×10⁸ ～5×10⁸ 個細(xì)胞/5ml（50ml離心管）。

2、用移液器吸取3ml（使用12ml離心管時）或5ml（使用50ml離心管時）高密度溶液，將槍頭伸到離心管底，緩慢將高密度溶液加入細(xì)胞懸液下方。

3、室溫，800g離心15min。為了取得好的分離效果，將離心機(jī)的“brake”開關(guān)關(guān)掉。

4、使用5ml移液器，沿高密度層表面緩慢移動移液器槍頭，吸入漂浮在高密度層上方的活細(xì)胞，盡量少收集高密度溶液。將活細(xì)胞移入另一管中。

5、加入RPMI-5*培養(yǎng)基（少量細(xì)胞加入10ml，細(xì)胞量較多時加入40ml），室溫，200g離心10min。重復(fù)一次。

6、以適量培養(yǎng)基混懸細(xì)胞以便進(jìn)行下一步操作。

詳細(xì)請看：小鼠單個核細(xì)胞分離一步梯度法去除死細(xì)胞